Właściwości farmakodynamiczne
Lincocin 500 mg

Linkomycyna, należąca do grupy linkozamidów (kod ATC: J01FF02), wykazuje działanie przeciwbakteryjne o charakterze bakteriobójczym lub bakteriostatycznym, zależne od wrażliwości patogenu oraz stężenia leku w miejscu infekcji. Mechanizm działania polega na hamowaniu biosyntezy białek bakteryjnych poprzez wiązanie z podjednostką 50S rybosomów. Wrażliwość bakterii na linkomycynę najlepiej ocenia się na podstawie czasu utrzymywania stężenia leku powyżej MIC. W praktyce klinicznej, ze względu na brak specyficznych wartości granicznych dla linkomycyny, stosuje się interpretację wrażliwości na klindamycynę jako wskaźnik zastępczy, zgodnie z wytycznymi CLSI i EUCAST. Wartości MIC dla Staphylococcus spp. wynoszą ≤ 0,5 µg/ml dla szczepów wrażliwych, 1-2 µg/ml dla średniowrażliwych i ≥ 4 µg/ml dla opornych, natomiast dla Streptococcus pneumoniae i paciorkowców β-hemolizujących odpowiednio ≤ 0,25 µg/ml, 0,5 µg/ml i ≥ 1 µg/ml. Metoda dyfuzyjno-krążkowa z krążkiem zawierającym 2 µg linkomycyny pozwala na ocenę stref zahamowania wzrostu, gdzie np. dla Staphylococcus spp. strefa ≥ 21 mm wskazuje na wrażliwość.

Właściwości farmakodynamiczne leku Lincocin (linkomycyna)

Linkomycyna należy do grupy farmakoterapeutycznej określanej jako leki przeciwbakteryjne do stosowania ogólnego, podgrupy linkozamidów, o kodzie ATC: J01FF02. Działanie przeciwbakteryjne linkomycyny może mieć charakter bakteriobójczy lub bakteriostatyczny, co zależy od wrażliwości bakterii oraz stężenia antybiotyku w miejscu infekcji.1

Mechanizm działania

Linkomycyna to antybiotyk pozyskiwany na drodze fermentacji z bakterii Streptomyces lincolnensis. Jej mechanizm działania polega na hamowaniu biosyntezy białek bakteryjnych poprzez wiązanie się z podjednostką 50S rybosomów bakteryjnych. W warunkach in vitro wykazuje głównie działanie bakteriostatyczne. Efektywność przeciwbakteryjna linkomycyny najlepiej koreluje z czasem, w którym stężenie tej substancji czynnej utrzymuje się powyżej wartości MIC (minimalnego stężenia hamującego) dla danego patogenu wywołującego zakażenie.2

Mechanizm oporności

Linkomycyna wykazuje pełną oporność krzyżową z klindamycyną. Oporność bakterii z rodzaju Staphylococcus i Streptococcus najczęściej wynika z metylacji określonych nukleotydów w 23S RNA, który jest składnikiem podjednostek 50S rybosomów. Ta modyfikacja może determinować występowanie oporności krzyżowej również na makrolidy i streptograminy B, co określa się jako fenotyp MLSB. Istotne jest, aby w przypadku izolatów wykazujących oporność na makrolidy, przeprowadzić badanie pod kątem indukowalnej oporności na linkomycynę/klindamycynę metodą dwóch krążków (D-zone test).3

Metodologia oznaczania wrażliwości na linkomycynę in vitro

Badania wrażliwości patogenów na linkomycynę powinny być przeprowadzane przy użyciu standardowych metod laboratoryjnych, zgodnie z zaleceniami CLSI (Instytutu Norm Klinicznych i Laboratoryjnych) lub EUCAST (Europejskiego Komitetu ds. Oznaczania Lekowrażliwości Drobnoustrojów). Ponieważ żadna z tych organizacji nie ustaliła wartości granicznych wrażliwości specyficznie dla linkomycyny, rekomenduje się badanie wrażliwości na klindamycynę jako wskaźnik zastępczy. Należy pamiętać, że w przypadku szczepów opornych na makrolidy (Staphylococcus, Streptococcus pneumoniae, paciorkowce beta-hemolizujące), oporność na linkozamidy może być indukowalna, co wymaga badania metodą dwóch krążków lub inną standardową metodą.4

Kryteria interpretacyjne wyników badań wrażliwości na klindamycynę według CLSI

Drobnoustrój Minimalne stężenie hamujące (MIC w µg/ml) Metoda dyfuzyjno-krążkowa (średnica strefy zahamowania w mm)
Wrażliwy Średniowrażliwy Oporny Wrażliwy Średniowrażliwy Oporny
Staphylococcus spp. ≤ 0,5 1-2 ≥ 4 ≥ 21 15-20 ≤ 14
Streptococcus pneumoniae, paciorkowce β-hemolizujące i paciorkowce zieleniące ≤ 0,25 0,5 ≥ 1 ≥ 19 16-18 ≤ 15
Bakterie beztlenowe ≤ 2 4 ≥ 8 Nie dotyczy Nie dotyczy Nie dotyczy

Zawartość w krążku wynosi 2 µg. Kryteria interpretacyjne MIC dla bakterii beztlenowych oparte są na metodzie rozcieńczeń w agarze.5

Zarówno stosowana metoda rozcieńczeń, jak i metoda dyfuzyjno-krążkowa powinna zostać zwalidowana przy użyciu szczepów do kontroli jakości (QC) wskazanych przez CLSI.6

Zakresy kontroli jakości dla badań wrażliwości na klindamycynę (wg CLSI)

Drobnoustrój Zakres minimalnego stężenia hamującego (MIC w µg/ml) Zakres dla metody krążkowo-dyfuzjnej (średnica strefy zahamowania w mm)
Staphylococcus aureus ATCC 29213 0,06-0,25 Nie dotyczy
Staphylococcus aureus ATCC 25923 Nie dotyczy 24-30
Streptococcus pneumoniae ATCC 49619 0,03-0,12 19-25
Bacteroides fragilis ATCC 25285 0,5-2 Nie dotyczy
Bacteroides thetaiotaomicron ATCC 29741 2-8 Nie dotyczy
Eggerthella lenta ATCC 43055 0,06-0,25 Nie dotyczy

Kryteria interpretacyjne MIC dla bakterii beztlenowych oparte są na metodzie rozcieńczeń w agarze. ATCC® jest zastrzeżonym znakiem towarowym American Type Culture Collection.7

Kryteria interpretacyjne wyników badań wrażliwości na klindamycynę według EUCAST

Drobnoustrój Minimalne stężenie hamujące (MIC w µg/ml) Metoda dyfuzyjno-krążkowa (średnica strefy zahamowania w mm)
Staphylococcus spp. ≤ 0,25 ≥ 22
Paciorkowce grupy A, B, C, G ≤ 0,5 ≥ 17
Streptococcus pneumoniae ≤ 0,5 ≥ 19
Paciorkowce zieleniące ≤ 0,5 ≥ 19
Beztlenowe bakterie Gram-dodatnie (z wyjątkiem Clostridium difficile) ≤ 4 Nie dotyczy
Beztlenowe bakterie Gram-ujemne ≤ 4 Nie dotyczy

Zawartość w krążku wynosi 2 µg. Kryteria interpretacyjne MIC dla bakterii beztlenowych oparte są na metodzie rozcieńczeń w agarze.8

Zakresy kontroli jakości dla badań wrażliwości na klindamycynę (wg EUCAST)

Drobnoustrój Zakres minimalnego stężenia hamującego (MIC w µg/ml) Zakres dla metody dyfuzyjno-krążkowej (średnica strefy zahamowania w mm)
Staphylococcus aureus ATCC 29213 0,06-0,25 23-29
Streptococcus pneumoniae ATCC 49619 0,03-0,12 22-28

ATCC® jest zastrzeżonym znakiem towarowym American Type Culture Collection.9

Spektrum działania przeciwbakteryjnego

Należy podkreślić, że częstość występowania nabytej oporności wśród różnych gatunków bakterii może znacząco różnić się w zależności od położenia geograficznego i czasu. Z tego powodu zaleca się uzyskanie lokalnych danych dotyczących oporności drobnoustrojów, szczególnie przy leczeniu ciężkich zakażeń. W przypadku gdy lokalna częstość występowania oporności jest na tyle wysoka, że skuteczność linkomycyny może być wątpliwa w niektórych rodzajach zakażeń, rekomendowane jest konsultowanie się ze specjalistami w zakresie diagnostyki mikrobiologicznej.10

Istotne jest uwzględnienie występowania oporności krzyżowej między linkomycyną a klindamycyną. Zaobserwowano również, że w przypadku metycylinoopornego gronkowca złocistego (MRSA) oraz niektórych gatunków Clostridium, może występować zmniejszenie wrażliwości na linkomycynę/klindamycynę w miarę upływu czasu.11

Drobnoustroje wrażliwe na linkomycynę

Do drobnoustrojów, które zazwyczaj wykazują wrażliwość na linkomycynę, zalicza się:12

Bakterie względnie tlenowe Gram-dodatnie:

  • Staphylococcus aureus (wyłącznie szczepy wrażliwe na metycylinę – MSSA)13
  • Streptococcus pneumoniae14
  • Streptococcus pyogenes15
  • Paciorkowce zieleniące16
  • Corynebacterium diphtheriae17

Bakterie beztlenowe i mikroaerofilne:

  1. 10.04.2026
  2. www.leksykon.com.pl