Właściwości farmakodynamiczne
Clarithromycin Adamed 500 mg

Klarytromycyna, półsyntetyczna pochodna erytromycyny A z grupy makrolidów (kod ATC: J01FA09), działa bakteriostatycznie poprzez wiązanie się z podjednostką 50S rybosomu, hamując syntezę białek bakteryjnych. Wykazuje szerokie spektrum działania obejmujące bakterie Gram-dodatnie i Gram-ujemne, tlenowe i beztlenowe, ze szczególnym nasileniem aktywności wobec Legionella pneumophila, Mycoplasma pneumoniae oraz Helicobacter pylori (działanie bakteriobójcze, silniejsze w środowisku obojętnym). MIC klarytromycyny jest około dwukrotnie niższe niż erytromycyny, co potwierdza jej wyższą skuteczność. Metabolit 14-OH-klarytromycyna wykazuje podobną lub nieco słabszą aktywność, z wyjątkiem Haemophilus influenzae, gdzie jest dwukrotnie silniejszy, co daje efekt synergistyczny. EUCAST definiuje stężenia graniczne dla wrażliwości: Streptococcus spp. ≤0,25 μg/ml, Staphylococcus spp. ≤1 μg/ml, Haemophilus spp. ≤1 μg/ml, Moraxella catarrhalis ≤0,25 μg/ml, a CLSI dla Helicobacter pylori ≤0,25 μg/ml.

Właściwości farmakodynamiczne leku Clarithromycin Adamed

Klarytromycyna należy do grupy farmakoterapeutycznej leków przeciwbakteryjnych do stosowania ogólnego, podgrupy makrolidów, którym przypisano kod ATC: J 01 FA 09. Jest półsyntetyczną pochodną erytromycyny A, która wykazuje działanie przeciwbakteryjne poprzez specyficzny mechanizm przyłączania się do podjednostek 50S rybosomów w komórkach bakterii wrażliwych, co prowadzi do zahamowania syntezy białka1.

Spektrum przeciwbakteryjne klarytromycyny

Badania in vitro potwierdzają, że klarytromycyna wykazuje aktywność zarówno wobec standardowych szczepów bakteryjnych, jak i szczepów klinicznych izolowanych od pacjentów. Minimalne stężenie hamujące (MIC) klarytromycyny jest około dwukrotnie niższe w porównaniu do erytromycyny, co świadczy o jej wyższej skuteczności2.

Spektrum działania klarytromycyny obejmuje szeroką gamę drobnoustrojów, w tym bakterie tlenowe i beztlenowe, zarówno Gram-dodatnie jak i Gram-ujemne. Szczególnie silne działanie wykazuje wobec Legionella pneumophila i Mycoplasma pneumoniae. W przypadku Helicobacter pylori klarytromycyna działa bakteriobójczo, przy czym jej aktywność jest znacząco wyższa w środowisku obojętnym niż kwaśnym3.

Istotne klinicznie jest również działanie klarytromycyny na drobnoustroje z rodzaju Mycobacterium, co potwierdzają badania in vitro i in vivo4.

Należy zaznaczyć, że drobnoustroje z rodziny Enterobacteriaceae i rodzaju Pseudomonas oraz inne Gram-ujemne pałeczki niewykazujące fermentacji laktozy, nie wykazują wrażliwości na klarytromycynę w badaniach in vitro5.

Drobnoustroje wrażliwe na klarytromycynę

Do drobnoustrojów, które wykazują potwierdzoną wrażliwość na klarytromycynę zarówno in vitro, jak i in vivo należą6:

Warto podkreślić, że wytwarzanie beta-laktamazy przez bakterie zazwyczaj nie ma wpływu na aktywność klarytromycyny. Należy jednak pamiętać, że większość szczepów gronkowców opornych na metycylinę i oksacylinę wykazuje także oporność na klarytromycynę7.

Drobnoustroje potencjalnie wrażliwe

Badania in vitro wykazały, że następujące drobnoustroje mogą być wrażliwe na klarytromycynę, jednak brak jest wystarczających danych z odpowiednio udokumentowanych badań klinicznych, które potwierdziłyby skuteczność kliniczną leku wobec tych patogenów8:

  • Tlenowe bakterie Gram-dodatnie:
    • Streptococcus agalactiae
    • Streptococcus (grupa C, F, G)
    • Streptococcus viridans
  • Tlenowe bakterie Gram-ujemne:
    • Bordetella pertussis
    • Pasteurella multocida
  • Beztlenowe bakterie Gram-dodatnie:
    • Clostridium perfringens
    • Peptococcus niger
    • Propionibacterium acnes
  • Beztlenowe bakterie Gram-ujemne:
    • Bacteroides melaninogenicus
  • Inne bakterie:
    • Borrelia burgdorferi
    • Treponema pallidum
    • Campylobacter jejuni

Aktywny metabolit klarytromycyny

W organizmie człowieka klarytromycyna jest metabolizowana do mikrobiologicznie czynnego metabolitu, jakim jest 14-OH-klarytromycyna. Ten metabolit wykazuje aktywność przeciwbakteryjną porównywalną ze związkiem macierzystym wobec większości drobnoustrojów lub do 2 razy słabszą. Wyjątkiem jest Haemophilus influenzae, wobec którego 14-OH-klarytromycyna działa dwukrotnie silniej niż klarytromycyna9.

Szczególnie istotnym zjawiskiem klinicznym jest synergistyczne lub addycyjne działanie związku macierzystego i 14-OH-klarytromycyny wobec H. influenzae, co zaobserwowano zarówno w badaniach in vitro, jak i in vivo. Efekt ten zależy od konkretnego szczepu bakteryjnego10.

Porównanie skuteczności z erytromycyną

W modelach doświadczalnych zakażeń u zwierząt wykazano, że klarytromycyna działa 2-10 razy silniej niż erytromycyna. U myszy klarytromycyna była skuteczniejsza od erytromycyny w zakażeniach ogólnoustrojowych, ropniach podskórnych oraz zakażeniach układu oddechowego wywołanych przez S. pneumoniae, S. aureus, S. pyogenes i H. influenzae11.

Szczególnie wyraźną przewagę klarytromycyny nad erytromycyną zaobserwowano w modelu zakażenia pałeczkami Legionella u świnek morskich. Klarytromycyna podawana dootrzewnowo w dawce 1,6 mg/kg masy ciała na dobę wykazywała silniejsze działanie niż erytromycyna w dawce 50 mg/kg masy ciała na dobę12.

Mechanizmy oporności bakterii na klarytromycynę

Nabyta oporność na makrolidy u S. pneumoniae, S. pyogenes i S. aureus rozwija się głównie za pośrednictwem dwóch podstawowych mechanizmów13:

  1. Mechanizm modyfikacji rybosomu (erm) – polega na metylacji rybosomu przez enzym, co uniemożliwia wiązanie się antybiotyku z rybosomem bakteryjnym.
  2. Mechanizm aktywnego transportu na zewnątrz komórki (mef lub msr) – polega na wypompowywaniu antybiotyku z komórki bakteryjnej, uniemożliwiając mu dotarcie do celu działania, którym jest rybosom.

W przypadku bakterii Moraxella i Haemophilus spp. nie zidentyfikowano dotychczas mechanizmów nabytej oporności na makrolidy14.

Mechanizmy oporności na makrolidy wykazują podobną skuteczność wobec antybiotyków makrolidowych z 14- i 15-węglowym pierścieniem laktonowym, takich jak erytromycyna, klarytromycyna, roksytromycyna i azytromycyna. Ważne jest, że mechanizmy oporności na penicylinę nie są związane z mechanizmami oporności na makrolidy15.

Istotnym klinicznie zjawiskiem jest oporność krzyżowa rozwijająca się za pośrednictwem mechanizmu erm między makrolidami (klarytromycyna) a linkozamidami (linkomycyna, klindamycyna)16.

Stężenia graniczne

Europejski Komitet Badania Wrażliwości Drobnoustrojów (EUCAST) określił następujące stężenia graniczne klarytromycyny, które pozwalają na klasyfikację drobnoustrojów jako wrażliwe lub oporne17:

Drobnoustrój Wrażliwy (≤) Oporny (>)
Streptococcus spp. 0,25 μg/ml 0,5 μg/ml
Staphylococcus spp. 1 μg/ml 2 μg/ml
Haemophilus spp. 1 μg/ml 32 μg/ml
Moraxella catarrhalis 0,25 μg/ml 0,5 μg/ml

W przypadku Helicobacter pylori, dla którego klarytromycyna jest stosowana w terapiach eradykacyjnych, Instytut Standardów Klinicznych i Laboratoryjnych (CLSI) określił minimalne stężenie hamujące wzrost bakterii ≤0,25 μg/ml jako stężenie graniczne wskazujące na lekowrażliwość18.

Występowanie oporności w zależności od regionu geograficznego

Należy zwrócić uwagę, że współczynniki występowania nabytej oporności na klarytromycynę mogą się znacząco różnić w zależności od regionu geograficznego oraz mogą ulegać zmianom w czasie. W związku z tym, szczególnie w przypadku leczenia ciężkich zakażeń, zaleca się uzyskanie aktualnych informacji dotyczących lokalnych wzorców oporności. W sytuacjach, gdy częstość występowania oporności na danym obszarze jest wysoka, użyteczność klarytromycyny w leczeniu niektórych rodzajów zakażeń może być ograniczona i w takich przypadkach wskazana jest konsultacja z ekspertami w dziedzinie antybiotykoterapii19.

  1. 10.04.2026
  2. www.leksykon.com.pl